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Coelogyne cristata Lindley

Effet de Coelogyne cristata Lindley sur le soulagement du syndrome de la fatigue chronique chez des rats Wistar âgés

 

Achintya Mitraa

Tapas Kumar Surb

Sachhidananda Upadhyaya

Dipankar Bhattacharyyab

Jayram Hazraa

 

 

Résumé

Contexte

Swarna Jibanti, connue scientifiquement sous le nom de Coelogyne cristata Lindley (Orchidaceae), une orchidée mentionnée dans la médecine ayurvédique est utilisée pour promouvoir une vie en bonne santé.
Objectifs)

Le présent travail visait à étudier l’efficacité de l’extrait hydroalcoolique de pseudobulbes de C. cristata (CCE) pour évaluer son rôle sur les modifications comportementales et biochimiques induites par le syndrome de fatigue chronique (SFC) chez des rats Wistar âgés par rapport au Panax ginseng (PG). , un prototype d’agent anti-stress.
matériaux et méthodes

CFS a été induit par la nage forcée pendant 21 jours consécutifs pour une durée déterminée (séances de 15 min). Les critères de CFS dus à la fatigue ont été comptés en utilisant respectivement l’activité locomotrice, la dépression et l’anxiété par photactomètre automatisé, le temps d’immobilité et l’activité du labyrinthe en plus. Une étude de toxicité aiguë du CCE (jusqu’à 2 g / kg, essai limite) a également été réalisée. Pour le CFS, les animaux ont été divisés en cinq groupes: groupes témoins naïfs, témoins, traités avec CCE (25 mg / kg de poids corporel, 250 mg / kg de poids corporel) et traités avec du PG standard (100 mg / kg de poids corporel). Tous les médicaments ont été administrés par voie orale pendant 21 jours consécutifs avec le SFC. Après évaluation des paramètres comportementaux, tous les animaux ont été sacrifiés au jour 21 et le potentiel antioxydant in vitro du CCE a été déterminé par les peroxydes lipidiques, les nitrites, la catalase (CAT) et la superoxyde dismutase (SOD) dans les tissus cérébraux.

Résultats

Le CCE s’est révélé non toxique. Les rats âgés traités au CCE ont significativement amélioré (p <0,001) le mouvement locomoteur spontané par rapport aux rats témoins, tout en diminuant la période de mobilité ou le score de dépression. Dans le CFS, CCE a également augmenté le temps passé (p <0,001) dans les bras ouverts tout en réduisant le temps passé dans le bras fermé par rapport au contrôle du CFS, indiquant ainsi un score d’anxiété plus bas. De plus, une diminution marquée de la peroxydation lipidique, des niveaux de nitrite et de SOD était présente après le traitement au CCE et une augmentation significative du taux de catalase de manière significative (p <0,01) par rapport au contrôle du CFS. PG a également montré des actions similaires.

Conclusion

Les résultats ont confirmé les actions thérapeutiques potentielles du CCE contre le SFC induit expérimentalement chez le rat âgé, qui pourraient être dues à ses propriétés antioxydantes médiatrices du SNC.

 

 

Mots clés

Syndrome de fatigue chronique
Vieillissement
Coelogyne cristata
Panax ginsen
Orchidées

1. Introduction

Coelogyne cristata Lindley (famille: Orchidaceae) est une espèce d’orchidée de haute altitude (1600–2000 m), située à l’est de l’Himalaya et connue sous le nom de Swarna Jibanti dans le Bengale occidental, en Inde et au Bangladesh [1], [2]. Swarna Jibanti est utilisé comme stimulant et tonique chez les patients âgés souffrant de maladies persistantes telles que l’asthme, les changements dégénératifs et les maladies transmissibles par le sang [3], [4], [5], [6]. En Ayurveda, il est inclus dans le Vayasthāpaka ou médicament anti-âge [7], [8], [9]. Les analyses chimiques ont révélé la présence de deux phénanthrènes, la coeloginanthridine (3,5,7-trihydroxy-1,2-diméthoxy-9,10-dihydrophénanthrène) et la coéloginanthrine (3,5,7-trihydroxy-1,2-diméthoxyphénanthrène) [10 ], [11]. Une enquête plus poussée a permis de découvrir deux nouveaux stilbénoïdes, nommés coeloginone et coeloginanthrone [12]. Les phénanthrènes sont les opioïdes prototypiques qui sont vraisemblablement formés par couplage oxydant des noyaux aromatiques des précurseurs du stilbène et possèdent plusieurs activités biologiques [13]. Les phénanthrènes ont été étudiés pour leurs propriétés cytotoxiques, antimicrobiennes, spasmolytiques, anti-inflammatoires, anti-plaquettaires, anti-allergiques, immunomodulateurs, anticancéreux, anti-vieillissement, athérosclérose [14], [15], [13]. L’activité anti-stress et anti-oxydante d’herbe similaire de la famille des Orchidaceae a également été rapportée [16], [17].

Bien que cette orchidée soit traditionnellement utilisée chez les patients gériatriques du sous-continent indien, il n’existe pas de données scientifiques disponibles. Cependant, le plus gros problème posé par le problème gériatrique est que, dans la plupart des cas, l’affection ne peut être attribuée à une seule cause ni à certaines affections telles que des troubles neuropsychiatriques [18]. Un certain nombre d’études chez l’homme et chez des animaux de laboratoire montrent que l’hyperactivité de l’axe HPA (hypothalamus hypophyso-surrénalien) contribue à la détérioration neuronale et périphérique associée au vieillissement [19], [20]. Il existe des preuves évidentes qu’une augmentation de l’activité glucocorticoïde et de la CRH centrale ou de l’hormone de libération de la corticotropine au cours du vieillissement peuvent avoir des effets néfastes et contribuer aux conditions pathologiques associées au vieillissement, telles que dépression, anxiété, neurodégénérescence, troubles immunitaires et métaboliques [18], [21] . Par ailleurs, le syndrome de fatigue chronique (SFC) est principalement caractérisé par une fatigue invalidante prolongée de troubles psychiatriques et neurologiques sous-jacents nécessitant une évaluation psychiatrique, psychologique et neurologique sous-jacente [22], [23], [24]. Il est bien établi qu’il existe une prévalence élevée au cours de la vie de symptômes affectifs, tels que la dépression, la dysthymie et l’anxiété dans le syndrome de fatigue chronique [25], [26], [27]. Il existe de fortes corrélations entre les lésions oxydatives du cerveau dues au syndrome de fatigue chronique et le processus de vieillissement [25], [28], [29], [30].

La présente étude a été conçue pour explorer l’efficacité d’un extrait riche en phénanthrène d’orchidée C. cristata Lindley dans les modifications comportementales induites par le SFC chez des animaux âgés. Des estimations biochimiques ont également été réalisées pour établir l’activité antioxydante de cette plante in vivo, tandis que Panax ginseng était utilisé comme prototype de standard [25], [31], [32].

2. Matériels et méthodes

2.1. Préparation médicamenteuse

Les pseudobulbes de C. cristata Lindley ont été achetés sur le marché de la drogue de Kolkata, en Inde, et authentifiés par le département de botanique de l’université de Burdwan, au Bengale occidental; Le spécimen de référence a été déposé au musée du département de pharmacognosie de l’Institut national de recherche sur le développement des médicaments ayurvédiques à Kolkata (NRIADD / 2011/03). Les matières végétales ont été nettoyées et séchées dans un hangar et une poudre grossière a été préparée à l’aide d’un pulvérisateur. Les matières grossières tamisées ont été dégraissées successivement à l’éther de pétrole et au chloroforme, puis extraites à l’hydroalcool (à 60%) pendant 72 h. L’extrait a été concentré sous pression réduite pour obtenir une masse sèche (CCE). L’extrait hydro-alcoolique a été ensuite purifié par plusieurs chromatographies sur silice et l’analogue des phénanthrènes a été identifié par analyse HPTLC, HPLC et LC-MS [33].

 

 

2.2. Animaux

Des rats Wistar mâles consanguins de 20 mois (300 à 325 g) ont été sélectionnés sur la base de leur poids corporel et groupés pour une évaluation pharmacologique. Les animaux ont été acclimatés pendant 7 jours et un examen médical a été effectué pendant la période d’acclimatation. Les rats ont été hébergés individuellement dans des cages en polypropylène, des aliments pour animaux, de l’eau minérale ad libitum pendant toute la durée de l’étude. La température a été maintenue à 22 ± 2 ° C avec une humidité relative de 60–70% et l’éclairage a été contrôlé pour donner une séquence approximative de 12 h de lumière et 12 h d’obscurité. Les expériences sur les animaux ont été menées conformément aux directives éthiques standard du Comité d’éthique pour les animaux dans les établissements (numéro d’agrément: IAEC / 2010 / 7-09 du 10/03/2010).

2.3. Étude de toxicité aiguë

Le CCE a été administré de manière progressive arithmétique à des doses normales (50, 100, 200, 400, 800, 1600 et 2000 mg / kg p.o) à des rats normaux pour étudier la dose létale d’extrait de plante [34]. Les animaux ont été examinés avec soin pour les signes de toxicité, les différences de comportement, morphologiques et de mortalité pendant les 4 premières heures, puis ont été gardés en observation pendant 14 jours. Les rats recevant différentes doses de CCE ne présentaient aucun signe clinique de toxicité jusqu’à une dose de 2 g / kg de poids corporel par voie orale et il n’y avait pas de mortalité. D’autres doses plus élevées n’ont pu être administrées en raison du caractère collant et de la solubilité moindre du produit.

2.4. Protocoles expérimentaux

Les rats Wistar mâles âgés ont été divisés en cinq groupes (n = 6). Après avoir effectué des expériences pilotes, deux doses orales de CCE, à savoir 125 mg / kg poids corporel et 250 mg / kg ont finalement été retenus pour l’étude et 100 g / kg de P. ginseng. (p.o) a été utilisé comme prototype de norme [27], [31], [33]. Les animaux ont été regroupés comme suit:

Groupe I: Animaux naïfs, qui n’ont été ni stressés ni extraits.

Groupe II: animaux témoins soumis à une nage forcée (pour induire le SFC) pendant 21 jours, mais sans aucun extrait; reçu uniquement le véhicule (eau distillée, 0,5 ml / 100 g).

Groupe III: animaux d’essai (CCE-125), soumis à la nage forcée et traités avec du CCE à la dose de 125 mg / kg de poids corporel pendant 21 jours.

Groupe IV: animaux d’essai (CCE-250), soumis à la nage forcée et traités avec du CCE à la dose de 225 mg / kg de poids corporel pendant 21 jours.

Groupe V: animaux d’essai (PG-100), soumis à la nage forcée et traités avec P. ginseng à la dose de 100 mg / kg de poids corporel pendant 21 jours.

Des extraits en poudre de C. cristata (CCE) et de P. ginseng (PG) ont été administrés par voie orale chaque jour, une heure avant l’exposition à la nage forcée.

2.5. Syndrome de fatigue chronique induit par la natation

Les rats ont été exposés à la nage forcée (sauf groupe I) pour provoquer une fatigue chronique. Les animaux ont été contraints de nager pendant 15 jours tous les jours, pendant 15 jours, dans une baignoire en verre (45 cm × 20 cm × 45 cm) contenant de l’eau jusqu’à 30 cm de hauteur à la température ambiante (22–24 ° C). Après une activité vigoureuse initiale, chaque animal a adopté une posture immobile typique par intermittence avec cessation complète des mouvements. Après avoir nagé pendant 10 min, la période d’immobilité pendant 5 min a été observée pendant 21 jours consécutifs. Les médicaments ont été administrés 1 heure avant le test chaque jour. La durée totale de la période d’immobilité en secondes pour une période de 10 à 15 minutes a été notée pour une solution de remplacement tous les 7 jours, jusqu’à 3 semaines. Cette exposition chronique à la nage forcée a entraîné une dépression et une fatigue qui représentaient le syndrome de fatigue chronique [30], [36], [37].

 

2.6 Activité locomotrice

L’activité somatomotrice chez les rats âgés a été évaluée à l’aide d’un photo-actomètre numérique (Sentwin, Inde). Avant d’être soumis au SFC, chaque rat était placé sur le photo-actomètre et ses mouvements (score numérique) étaient notés pendant 5 min. La modification de la fonction locomotrice a été évaluée aux jours 1, 7, 14 et 21 dans tous les groupes de rats avant la nage [30], [38].

2.7 Niveau d’anxiété

Elevé plus labyrinthe, est un test unique pour l’évaluation de l’anxiété chez les rongeurs. Le labyrinthe a deux bras ouverts opposés de 50 cm × 10 cm, croisés avec deux bras opposés fermés de même dimension et dotés de murs de 40 cm de hauteur. Les bras sont reliés par un carré central de 10 cm × 10 cm, donnant à l’appareil la forme d’un signe plus. L’ensemble du labyrinthe est élevé à une hauteur de 50 cm. Les niveaux d’anxiété de base de chaque animal ont été évalués une heure après l’avoir soumis à une nage forcée chronique les jours 1, 7, 14 et 21 [30], [38]. Les rats ont été placés individuellement au centre du labyrinthe plus, la tête tournée vers un bras ouvert. Pendant la période suivante de 5 minutes, les paramètres suivants ont été notés: temps total passé dans le bras fermé (en secondes), temps total passé dans le bras ouvert (en secondes) et nombre total d’entrées dans le bras ouvert [39].

2.8. Estimation biochimique

Une fois toutes les études comportementales terminées, les animaux ont été sacrifiés par décapitation. Les cerveaux ont été retirés et homogénéisés dans un tampon phosphate 0,1 M (pH 7,4). La fraction post-nucléaire a été obtenue par centrifugation à 1000 xg pendant 15 min et pour d’autres dosages, l’homogénat a été centrifugé à 10 000 xg pendant 20 min à 4 ° C [27]. Par la suite, l’évaluation biochimique de l’homogénat de cerveau réalisée dans tous les groupes de rats comprenait:

Estimation des protéines: la teneur en protéines de l’homogénat de cerveau a été mesurée selon la méthode de Lowry et al. (1951) utilisant l’albumine de sérum bovin comme standard [40].

Evaluation de la peroxydation lipidique: La quantité de peroxydation lipidique et enfin la formation de malondialdéhyde (MDA) ont été estimées par spectrophotométrie à 532 nm après réaction avec l’acide thiobarbiturique et exprimées en nM / mg de protéine [41].

Dosage des nitrites: La quantité de nitrites présente dans le cerveau a été estimée par spectophotométrie à l’aide du réactif de Greiss [42].

Dosage de la superoxyde dismutase: L’activité de la superoxyde dismutase mesurée dans le tissu cérébral a été réalisée conformément à la méthode de Winterbourne en utilisant la méthode de réduction du colorant nitro bleu tétrazolium (NBT) [43].

Estimation de la catalase: l’activité de la catalase a été mesurée par spectrophotométrie selon la méthode de Sinha (1972) [44].

2.9 analyses statistiques

Toutes les données ont été évaluées à l’aide de statistiques descriptives et ordinales. Les résultats ont été exprimés en moyenne ± SD. La comparaison entre le groupe témoin et le groupe traité a été effectuée à l’aide de tests de comparaison à plusieurs groupes tels que le test de Kruskal – Wallis suivi d’un test U de Mann – Whitney. Dans tous les tests, le critère de signification statistique était p <0,05.

3. Résultats

3.1. Dosage chimique

L’analyse phytochimique a révélé la présence d’alcaloïdes, de flavonoïdes, de glycosides, de phénols, de saponines et de stérols dans les ECC. Les extraits successifs de pseudobulbe de C. cristata ont révélé la présence de biomarqueurs actifs au travers de profils HPLC. Le chromatogramme HPLC a montré 12 pics. Cependant, un pic était important avec une superficie et une hauteur significatives (> 67,97%). Le pic le plus abondant avec la superficie et la hauteur a été observé au temps de rétention 10,69 (Rt, min), qui est probablement le phénanthrène. Les principaux composés phénoliques ont été détectés par chromatographie en phase liquide-spectrométrie de masse (LC-MS).

3.2. Étude de toxicité aiguë

Tous les groupes ont montré un comportement normal. pas de mortalité et pas de symptômes anormaux, tels que convulsions, convulsions, hyper réactivité, hypothermie, larmoiement, salivation, fourrure ou pilo-érection, etc. au cours de l’étude depuis 4 h de dosage jusqu’à 2 g / kg. Aucune mortalité n’a été observée jusqu’à 14 jours.

3.3. Activité locomotrice

Le rat âgé a montré des mouvements restreints. Le CFS a considérablement réduit les mouvements chez les rats en 21 jours par rapport aux rats témoins naïfs. Le traitement par CCE a significativement amélioré le mouvement spontané en fonction de la dose chez les rats atteints de SFC, de la même manière que le groupe standard (Tableau 1).

Tableau 1. Effet de l’extrait de C. cristata et de l’extrait de P. ginseng sur l’activité locomotrice chez des rats âgés atteints de fatigue chronique.

 

Groups Treatments Photo-actometer score in 5 min
Day-1 Day-7 Day-14 Day-21
I Naïve 162.4 ± 3.18 168.7 ± 4.06 160.7 ± 3.98 155.9 ± 3.15
II CFS 162.9 ± 4.62a 129.4 ± 2.67a*** 109.8 ± 3.87a*** 82.6 ± 5.11a***
III CFS+CCE-125 mg/kg 165.7 ± 4.59b 145.6 ± 3.72b* 125.1 ± 2.06b 120.5 ± 5.79b***
IV CFS+CCE-250 mg/kg 160.8 ± 3.83b 141.6 ± 2.93b* 118.4 ± 2.19b 106.2 ± 4.57b***
V CFS+PG-100 mg/kg 164.3 ± 3.94b 152.5 ± 3.64b** 137.6 ± 2.81b* 128.1 ± 5.38b***

 

Pour la comparaison entre quatre groupes, un test de comparaison à plusieurs groupes a été effectué. Les valeurs ont été exprimées en tant que moyenne ± SEM, n = 6. Le groupe naïf comprend les animaux traités au véhicule qui n’ont pas été soumis à une nage forcée chronique (SFC), le contrôle se réfère au groupe traité au véhicule soumis au SFC, la CEE à l’extrait de C. cristata et au PG. à l’extrait de P. ginseng. a comparé au contrôle naïf et b comparé au groupe de contrôle chronique de la nage forcée du même jour. * représenté p <0,05, ** p <0,01 et *** p <0,001.

 

 

 

Groups Treatments Immobility score in 5 min
Day-1 Day-7 Day-14 Day-21
II CFS 108.5 ± 2.23 146.4 ± 3.18 178.9 ± 3.46 194.7 ± 4.19
III CFS+CCE-125 mg/kg 102.6 ± 2.18 118.7 ± 2.09*** 127.4 ± 2.72*** 138.5 ± 2.93***
IV CFS+CCE-250 mg/kg 108.6 ± 1.72 114.5 ± 2.84*** 121.8 ± 2.95*** 129.2 ± 3.14***
V CFS+PG-100 mg/kg 104.7 ± 1.95 126.1 ± 2.76** 131.7 ± 2.87*** 142.6 ± 3.66***

Pour la comparaison entre trois groupes, un test de comparaison de plusieurs groupes a été effectué. Les valeurs ont été exprimées en moyenne ± S.E.M., n = 6. Le groupe de contrôle comprend les animaux traités au véhicule qui ont été soumis à une nage forcée chronique (CFS), CEE désigne l’extrait de C. cristata et PG, l’extrait de P. ginseng. * représente p <0,05, ** p <0,01 et *** p <0,001 par rapport au groupe témoin chronique de nage forcée du même jour.s.

 

 

3.5. Score d’anxiété – test élevé et labyrinthe

Une augmentation du temps passé dans le bras fermé et moins long dans le bras ouvert, et moins d’entrées dans le bras ouvert dans le labyrinthe lors de l’observation des jours 7, 14 et 21 a révélé un état d’anxiété chez les rats témoins du syndrome de la fatigue chronique. par rapport au jour 1 (tableau 3, tableau 4). Le groupe de rats traités au CCE a passé significativement plus de temps également dans le bras ouvert et a diminué le temps passé dans le bras fermé par rapport au contrôle du CFS, comme dans le prototype PG (Tableau 5).

Tableau 3. Effet de l’extrait de C. cristata et de l’extrait de P. ginseng sur le temps passé dans le bras fermé dans le labyrinthe chez les rats âgés atteints de fatigue chronique.

 

Groups Treatments Closed arm time (sec)
Day-1 Day-7 Day-14 Day-21
I Naïve 180.9 ± 4.96 173.8 ± 6.24 176.1 ± 5.82 177.4 ± 6.02
II CFS 188.5 ± 5.33a 274.1 ± 4.50a*** 269.8 ± 5.70a*** 253.8 ± 6.17a***
III CFS+CCE-125 mg/kg 181.2 ± 5.84b 193.6 ± 7.13b*** 165.5 ± 8.53b*** 158.2 ± 5.28b***
IV CFS+CCE-250 mg/kg 179.6 ± 7.61b 174.5 ± 6.51b*** 136.3 ± 5.06b*** 131.6 ± 4.98b***
V CFS+PG-100 mg/kg 185.4 ± 6.72b 186.9 ± 5.87b*** 148.4 ± 6.22b*** 142.6 ± 5.16b***

 

Pour la comparaison entre quatre groupes, un test de comparaison à plusieurs groupes a été effectué. Les valeurs ont été exprimées en tant que moyenne ± SEM, n = 6. Le groupe normal comprend les animaux traités au véhicule qui n’ont pas été soumis à une nage forcée chronique (SFC), le contrôle se réfère au groupe traité au véhicule soumis au SFC, la CEE à l’extrait de C. cristata et à la PG. à l’extrait de P. ginseng. a comparé au contrôle naïf et b comparé au groupe de contrôle chronique de la nage forcée du même jour. * représenté p <0,05, ** p <0,01 et *** p <0,001.

 

 

Tableau 4. Effet de l’extrait de C. cristata et de l’extrait de P. ginseng sur le temps passé dans un bras ouvert dans un labyrinthe chez des rats âgés atteints de fatigue chronique.

 

Groups Treatments Open arm time (sec)
Day-1 Day-7 Day-14 Day-21
I Naïve 31.4 ± 2.85 27.2 ± 1.69 31.5 ± 1.58 29.8 ± 1.73
II CFS 27.5 ± 2.99a 16.8 ± 1.91a* 18.6 ± 1.52a** 21.4 ± 1.05a**
III CFS+CCE-125 mg/kg 34.6 ± 2.90b 40.9 ± 2.08b*** 50.6 ± 2.37b*** 52.6 ± 2.66b***
IV CFS+CCE-250 mg/kg 36.3 ± 1.73b 53.1 ± 2.21b*** 67.1 ± 2.62b*** 71.5 ± 2.42b***
V CFS+PG-100 mg/kg 29.2 ± 1.86b 44.7 ± 2.74b*** 59.3 ± 2.86b*** 64.8 ± 2.09b***

 

Pour la comparaison entre quatre groupes, un test de comparaison à plusieurs groupes a été effectué. Les valeurs ont été exprimées en tant que moyenne ± SEM, n = 6. Le groupe normal comprend les animaux traités au véhicule qui n’ont pas été soumis à une nage forcée chronique (SFC), le contrôle se réfère au groupe traité au véhicule soumis au SFC, la CEE à l’extrait de C. cristata et à la PG. à l’extrait de P. ginseng. a comparé au contrôle naïf et b comparé au groupe de contrôle chronique de la nage forcée du même jour. * représenté p <0,05, ** p <0,01 et *** p <0,001.

 

 

Tableau 5. Effet de l’extrait de C. cristata et de l’extrait de P. ginseng sur le nombre d’entrées dans le bras ouvert dans le labyrinthe chez le rat atteint de fatigue chronique.

 

Groups Treatments Number of entries (5 min)
Day-1 Day-7 Day-14 Day-21
I Naïve 4.7 ± 0.28 4.6 ± 0.32 5.1 ± 0.31 5.5 ± 0.46
II CFS 5.0 ± 0.36a 3.8 ± 0.30a** 2.8 ± 0.32a** 2.6 ± 0.44a**
III CFS+CCE-125 mg/kg 5.1 ± 0.47b 4.5 ± 0.34b 4.0 ± 0.26b* 4.3 ± 0.31b*
IV CFS+CCE-250 mg/kg 5.2 ± 0.42b 5.1 ± 0.54b 4.6 ± 0.34b* 4.7 ± 0.28b**
V CFS+PG-100 mg/kg 4.8 ± 0.39b 4.7 ± 0.38b 4.4 ± 0.31b* 4.4 ± 0.35b*

 

Pour la comparaison entre quatre groupes, un test de comparaison à plusieurs groupes a été effectué. Les valeurs ont été exprimées en tant que moyenne ± SEM, n = 6. Le groupe normal comprend les animaux traités au véhicule qui n’ont pas été soumis à une nage forcée chronique (SFC), le contrôle se réfère au groupe traité au véhicule soumis au SFC, la CEE à l’extrait de C. cristata et à la PG. à l’extrait de P. ginseng. a comparé au contrôle naïf et b comparé au groupe de contrôle chronique de la nage forcée du même jour. * représenté p <0,05 et ** p <0,01.

 

 

3.6. Études biochimiques dans la région du cerveau

La nage forcée chronique quotidienne pendant 21 jours a accéléré le stress oxydatif, comme en témoignent une augmentation significative des taux de peroxydation lipidique, de nitrites et de SOD et une diminution du taux de catalase dans le cerveau entier des groupes atteints du SFC par rapport au groupe témoin naïf. Le traitement par CEE (125 et 250 mg / kg) a considérablement inversé le stress oxydatif induit par le SCF en diminuant l’élévation du niveau de peroxydation lipidique, de nitrites et de SOD dans le cerveau et en augmentant de manière significative le taux de catalase. PG a également montré des résultats efficaces pour lutter contre le stress oxydatif provoqué par le SFC.

4. Discussion

Le principal défi en matière d’empêchement gériatrique est que, dans la plupart des cas, l’affection ne peut être attribuée à une seule cause ni à certaines affections neuropsychiatriques telles que la démence sénile ou la dépression d’Alzheimer [18], [45], [46]. Il existe également de nombreuses preuves que l’activation de l’axe HPA induite par le stress (hypothalamo-hypophyso-surrénalien) entraîne une perte d’épines de l’hippocampe, une inhibition de la prolifération des cellules de l’hippocampe et une déficience cognitive [31], [47], [48]. Le syndrome de fatigue chronique (SFC) se différencie par des difficultés cognitives et une fatigue induite par l’exercice, ainsi que par des symptômes de dysfonctionnement immunologique de tous les groupes d’âge [22], [49], [50]. La présence de lésions oxydatives de l’ADN et des lipides dans les tissus, en particulier dans le cerveau et les muscles, suggère des mécanismes de stress oxydatif dans le SFC [27], [28], [29], [30], [31]. Dans la présente étude, on a examiné le rôle de l’orchidée C. cristata Lindley dans les modifications comportementales induites par le CFS chez les animaux âgés. L’analyse phytochimique a révélé la présence d’alcaloïdes, de flavonoïdes, de glycosides, de phénols, de saponines et de stérols dans un extrait hydro-alcoolique de C. cristata (CCE). En outre, l’analyse chromatographique a identifié et mesuré l’analogue de phénanthrène, la coeloginanthridine, le 9,10-dihydrophénanthrène dans le CCE (67,97%) pouvant être considéré comme un biomarqueur actif [12], [33]. Des herbes de la famille des Orchidaceae contenant des composés naturels du phénanthrène auraient été utilisées pour leurs propriétés cytotoxiques, antimicrobiennes, spasmolytiques, anti-inflammatoires, anti-plaquettaires, anti-allergiques, immunomodulatrices, anticancéreuses et athérosclérose [13], [14], [ 15], [51]. Dans le contexte actuel, le CCE n’a montré aucun signe ni caractéristique de toxicité ni de mortalité allant jusqu’à 2,0 g / kg par dose orale chez les rats Wistar. Les résultats de la présente étude ont confirmé qu’aucun niveau d’effet indésirable observé (NOAEL) de CEE ne pouvait être défini comme supérieur à 2 g / kg chez le rat Wistar et avait été identifié comme non toxique. En outre, un traitement oral du CCE pendant trois semaines a considérablement augmenté l’activité motrice. De plus, le CCE augmentait l’endurance de la natation ou réduisait le niveau de dépression chez les rats âgés. La dépression est l’un des phénomènes psychologiques les plus courants du processus de vieillissement. Les présentes conclusions indiquent que le CCE exerce une action antidépressive et est efficace pour atténuer le syndrome de la fatigue chronique, en particulier chez les animaux vieillissants, fournissant des preuves scientifiques de la pratique ayurvédique en Inde.

Le stress oxydatif est depuis longtemps lié à la mort cellulaire neuronale associée à certaines affections neurodégénératives, en particulier au cours du vieillissement [48]. La présente étude a confirmé les dommages oxydatifs dans le cerveau de rat dus à la cause du SFC, comme en témoigne l’élévation des peroxydes lipidiques et des nitrites et superoxydes dismutases; tandis que la catalase était abaissée [25], [27], [30]. Parmi les enzymes antioxydantes, la catalase est la première ligne de défense contre les dommages oxydatifs. En fait, pendant le stress oxydatif avec d’autres radicaux nuisibles, des peroxydes d’hydrogène se forment également. La catalase a la capacité de neutraliser les peroxydes d’hydrogène dans les tissus, en particulier dans les situations de stress oxydatif. Le traitement par CCE a inversé les situations telles que P. ginseng. Des études antérieures avaient suggéré que P. ginseng, une médecine traditionnelle chinoise bien connue, favorisait la longévité et aidait le corps à mieux supporter le stress, tout en optimisant le fonctionnement de nombreux systèmes de l’organisme [32], [52], [53], [54] Nos résultats suggèrent que les phénanthrènes sont le composant actif du CCE et qu’il pourrait avoir des actions thérapeutiques potentielles sur le SFC et le stress oxydatif associé [13], [35]. Bien sûr, il existe d’autres mécanismes qui fonctionnent en présence de stress ou d’anxiété, tels que l’hippocampe ventral et d’autres paradigmes qui sont des marqueurs du fonctionnement de l’axe HPA comme les hormones hypophysaires ou leurs effets en aval, mais ils n’ont pas été traités dans cette étude [54 ], [55]. Ainsi, leur implication dans l’effet anti-stress du CCE n’a pas pu être exclue.

 

 

  1. ConclusionCes résultats indiquent que l’effet bénéfique du CCE sur le syndrome de fatigue chronique pourrait être dû à ses propriétés anti-anxiété, anti-dépressives et antioxydantes. On a également émis l’hypothèse que les phénanthrènes présents dans le CCE pourraient être responsables de ses actions biologiques et l’une des raisons pourrait être la modulation des voies enzymatiques antioxydantes.Sources de financementInstitut national de recherche sur le développement des médicaments ayurvédiques, Kolkata, relevant du Conseil central pour la recherche en sciences ayurvédiques, Ministère d’AYUSH, Gouvernement de l’Inde et Université des sciences de la santé du Bengale occidental, Kolkata.

    Les conflits d’intérêts

    Aucun.

    Reconnaissance

    Les auteurs remercient le vice-chancelier de l’Université des sciences de la santé du Bengale occidental, à Kolkata, d’avoir fourni l’affiliation de l’étude au doctorat. programme et autre support technique nécessaire. L’inspiration et les conseils de feu le professeur Pratip Kumar Debnath pour cette étude ont été chaleureusement remerciés.

 

 

References

[1]

G.C. Joshi, L.M. Tewari, N. Lohani, K. Upreti, J.S. Jalal, G. TewariDiversity of orchids in Uttarakhand and their conservation strategy with special reference to their medicinal importance

Rep Opin, 1 (2009), pp. 47-52

View Record in ScopusGoogle Scholar

[2]

R.M.P. GutierrezOrchids: a review of uses in traditional medicine, its phytochemistry and pharmacology

J Med Plant Res, 4 (2010), pp. 592-638

View Record in ScopusGoogle Scholar

[3]

R.N. Chopra, S.L. Nayar, I.C. ChopraGlossary of indian medicinal plants, publication and information directorate

CSIR, New Delhi, India (1985)

Google Scholar

[4]

R.D. LeleRejuvenation of the elderly

Bhartiya Vidya Bhavan, Bombay, India (1986)

Google Scholar

[5]

  1. Kumari, R. Pushpan, K. NishteswarMulti faceted actions of orchids in ethnomedicine–an appraisal

Int J Pharmaceu Biol Arch, 3 (1986), pp. 996-1002

Google Scholar

[6]

  1. Singh, A.K. Singh, S. Kumar, M. Kumar, P.K. Pandey, M.C.K. SinghMedicinal properties and uses of orchids: a concise review

Elixir Appl Bot, 52 (2012), pp. 11627-11634

View Record in ScopusGoogle Scholar

[7]

B.C. NagCommentray on Caraka Samhita (Bengali)

(1st ed.), Hindawi Publishing Corporation (1984)

Google Scholar

[8]

D.S. SinghTrends in geriatric medicine

(1st ed.), Geriatric Society of India, Tara Printings Works, Varansi, India (1996)

Google Scholar

[9]

H.S. Datta, S.K. Mitra, R. Paramesh, B. PatwardhanTheories and Management of Ageing: Modern and Ayurveda Perspectives

Evid Based Complement Alternat Med (2011)

article ID 528527

Google Scholar

[10]

P.L. Majumder, S. Banerjee, D.C. MaitiStilbenoids from the orchids Agrostophyllum callosum and Coelogyne flaccida

Phytochem, 39 (1995), pp. 649-653

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[11]

P.L. Majumder, S. Sen, S. MajumderPhenanthrene derivatives from the orchid Coelogyne cristata

Phytochem, 58 (2001), pp. 581-586

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[12]

P.L. Majumder, S. Banerjee, S. PalFour new stilbenoids from the orchids Coelogyne ochracea and Coelogyne cristata

J Indian Chem Soc, 88 (2011), pp. 1293-1304

View Record in ScopusGoogle Scholar

[13]

  1. Kovacs, A. Vasas, J. HohmannNatural phenanthrenes and their biological activity

Phytochem, 69 (2008), pp. 1084-1110

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[14]

K.S. Cheng, F.N. Ko, C.M. Teng, Y.C. WuAntiplatelet and vasorelaxing actions of some benzylisoquinoline and phenanthrene alkaloids

J Nat Prod, 59 (1996), pp. 531-534

Google Scholar

[15]

  1. Estelles, J.L. Martin, L. Milian, J.E. O’Connor, M.M. Losa, M.C. Nicolas, et al.Effect of two phenanthrene alkaloids on angiotensin II induced leukocyte endothelial cell interactions in vivo

Br J Pharmacol, 140 (2003), pp. 1057-1067

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[16]

  1. Chakrabarty, G.K. Dutta, S. Ghosh, P.K. DebnathInduction of antioxidative enzyme by the Ayurvedic herb Desmotrichum fimbriatum Bl. in mice

Indian J Exp Biol, 39 (2001), pp. 485-486

View Record in ScopusGoogle Scholar

[17]

G.K. Dutta, M. Chakrabarty, S. Ghosh, P.K. DebnathHepatoprotective effect of Desmotrichum fimbriatum BI. in mice with carbon tetrachloride-induced liver damage

Biomed Res, 13 (2002), pp. 81-84

Google Scholar

[18]

  1. AguileraHPA axis responsiveness to stress: implication of healthy aging

Exp Gerontol, 46 (2011), pp. 90-95

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[19]

R.M. SapolskyGlucocorticoids, stress and their adverse neurological effects: relevance to aging

Exp Gerontol, 34 (1999), pp. 721-732

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[20]

  1. Ferrari, F. MagriRole of neuroendocrine pathways of cognitive decline during aging

Age Res Rev, 7 (2008), pp. 225-233

Article

Download PDFCrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[21]

H.J. Cho, A. Skowera, A. Cleare, S. WesselyChronic fatigue syndrome: an update focusing on phenomenology and pathophysiology

Curr Opin Psychiatry, 19 (2006), pp. 67-73

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[22]

  1. Fukuda, S.E. Straus, I. Hickie, M.C. Sharpe, J.G. Dobbins, A. KomaroffThe chronic fatigue syndrome: a comprehensive approach to its definition and study

Ann Intern Med, 121 (1994), pp. 953-959

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[23]

A.J. CleareThe neuroendocrinology of chronic fatigue syndrome

Endocr Rev, 24 (2003), pp. 236-252

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[24]

  1. Chen, F.X. Liang, J. Moriya, H. Yamakawa, H. Sumino, T. Kanda, et al.Chronic fatigue syndrome and the central nervous system

J Int Med Res, 36 (2008), pp. 867-874

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[25]

A.C. Logan, C. WongChronic fatigue syndrome: oxidative stress and dietary modification

Altern Med Rev, 6 (1986), pp. 450-455

Google Scholar

[26]

  1. Afari, D. BuchwaldChronic fatigue syndrome: a Review

Am J Psychiatry, 160 (2003), pp. 221-236

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[27]

  1. Lyle, D. Bhattacharyya, T.K. Sur, S. Munshi, S. Paul, S. Chatterjee, et al.Stress modulating antioxidant effect of Nardostachys jatamansi

Indian J Biochem Biophys, 46 (2009), pp. 93-98

View Record in ScopusGoogle Scholar

[28]

  1. Kammedy, V.A. Spence, M. McLaren, A. Hill, C. Underwood, J.F. BelchOxidative stress levels are raised in chronic fatigue syndrome and are associated with clinical symptoms

Free Radic Biol Med, 39 (2005), pp. 584-589

Google Scholar

[29]

  1. Singh, V. Garg, S. Gupta, S.K. KulkarniRole of antioxidants in chronic fatigue syndrome in mice

Indian J Exp Biol, 40 (2002), pp. 1240-1244

View Record in ScopusGoogle Scholar

[30]

  1. Lyle, A. Gomes, T.K. Sur, S. Munshi, S. Paul, S. Chatterjee, et al.The role of antioxidant properties of Nardostacys jatamansi in alleviation of the symptoms of the chronic fatigue syndrome

Behav Brain Res, 202 (2009), pp. 285-290

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[31]

T.K. Sur, D. BhattacharyyaThe effect of Panax ginseng and diazepam on brain and hypothalamic 5-hydroxytryptamine during stress

Indian J Pharmacol, 29 (1997), pp. 318-321

View Record in ScopusGoogle Scholar

[32]

  1. Wang, C. Sun, Y. Zheng, H. Pan, Y. Zhou, Y. FanThe effective mechanism of the polysaccharides from Panax ginseng on chronic fatigue syndrome

Arch Pharm Res, 3 (2) (2013)

23963977

Google Scholar

[33]

  1. Mitra, S. Dutta, D.N. Mandal, K. Bhattacharyya, D. Bhattacharyya, J. HazraChemical characterization and antibacterial activity of Swarna Jibanti (Coelogyne cristata Lindl.)

Int J Ayu Pharm Chem, 3 (2015), pp. 299-315

View Record in ScopusGoogle Scholar

[34]

OECD Guideline for the testing of chemicals. Acute oral toxicity in animals. OECD/OCDE No. 423, Adopted 21st September 1998.

Google Scholar

[35]

  1. Lalremruta, S.P. PrasannaEvaluation of protective effect of Aegle marmelos Corr. in an animal model of chronic fatigue syndrome

Indian J Pharmacol, 44 (2012), pp. 351-356

View Record in ScopusGoogle Scholar

[36]

S.K. Kulkarni, G. KaurChronic fatigue syndrome, pathophysiology and management

Express Pharma Pulse, 2 (1998), pp. 33-38

Google Scholar

[37]

  1. Kaur, S.K. KulkarniComparative study of antidepressants and herbal psychotropic drugs in a mouse model of chronic fatigue

J Chronic Fatigue Syndr, 6 (2000), pp. 23-34

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[38]

P.S. Sapkota, T.K. Sur, P.K. Debnath, D. BhattacharyyaEffect of Peureria tuberosa on chronic foot shock stress in Wistar rats

Nepal Med Coll J, 12 (2010), pp. 234-238

Google Scholar

[39]

  1. Itoh, T. Nabeshima, T. KameyaUtility of an elevated plus maze for the evaluation of memory in mice: effects on nootropic, scopolamine and electroconvulsive shock

Psychopharmacol, 101 (1996), pp. 27-34

Google Scholar

[40]

O.H. Lowry, N.J. Rosebrough, A.L. Farr, R.J. RandallProtein measurement with the folin phenol reagent

J Biol Chem, 6 (1951), pp. 450-455

Google Scholar

[41]

  1. Ohkawa, N. Onishi, K. YagiAssay for lipid peroxidation in animal tissue by thiobarbituric acid reaction

Anal Biochem, 95 (1979), pp. 351-358

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[42]

L.C. Green, D.A. Wagner, J. GlogowskiAnalysis of nitrate, nitrite, and (15N) nitrate in biological fluids

Anal Biochem, 126 (1982), pp. 131-138

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[43]

C.C. Winterbourne, R.E. Hawkins, M. Brain, R.W. CarrelThe estimation of red cell superoxide dismutase activity

J Lab Chem Med, 85 (1975), pp. 337-341

Google Scholar

[44]

A.K. SinhaColorimetric assay of catalase

Analaytical Biochem, 47 (1972), pp. 389-394

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[45]

R.P. Bentall, P. Powel, F.J. Nye, R.H.T. EdwardsPredictors of response to treatment for chronic fatigue syndrome

Br J Psychol, 181 (2002), pp. 248-251

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[46]

H.L. DharApproach to anti-aging

Bombay Hosp J, 51 (2009), pp. 68-72

View Record in ScopusGoogle Scholar

[47]

  1. Amenta, E. Bronzetti, M. Mancini, J.A. Vega, D. ZaccheoCholine acetyltransferase and acetylcholinesterase in the hippocampus of aged rats: sensitivity to choline alphoscerate treatment

Mech Ageing Dev, 74 (1994), pp. 47-58

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

[48]

C.I. Fernandez, J. Collazo, Y. Bauza, M.R. Castellanos, O. LopezEnvironmental enrichment-behavior-oxidative stress interactions in the aged rat: issues for a therapeutic approach in human aging

Ann N Y Acad Sci, 1019 (2004), pp. 53-57

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[49]

Wessely SThe epidemiology of CFS

Epidemiol Rev, 17 (1995), pp. 139-145

Google Scholar

[50]

T.R. Gerrity, D.A. Papanicolaou, J.D. Amsterdam, S. Bingham, A. Grossman, T. HedrickImmunologic aspects of chronic fatigue syndrome

Neuroimmunomod, 11 (2004), pp. 351-357

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[51]

  1. Zhang, G.T. Liu, J.G. Shi, J.J. ZhangEffects of Coeloglossum viride var. bracteatum extract on memory deficits and pathological changes in senescent mice

Basic Clin Pharmacol Toxicol, 98 (2006), pp. 55-60

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[52]

  1. Bhattacharyya, T.K. SurEffect of Panax ginseng and diazepam on brain 5-hydroxy tryptamine and its modification by diclofenac in rats

Indian J Physiol Pharmacol, 43 (1999), pp. 505-509

CrossRefGoogle Scholar

[53]

T.K. Sur, D. BhattacharyyaPanax ginseng on brain and hypothalamic 5-hydroxytrytamine during immobilization stress: and its modification by parachlorophenylalanine

J Nat Remedies, 3 (2003), pp. 90-94

View Record in ScopusGoogle Scholar

[54]

  1. Lyle, S. Chakraborty, T.K. Sur, A. Gomes, D. BhattacharyyaNardostachys jatamansi protects against cold stress induced central monoaminergic and oxidative changes in rats

Neurochem Res, 57 (2012), pp. 2748-2757

CrossRefView Record in ScopusGoogle Scholar

[55]

  1. Siemionow, Y. Fang, L. Calabrese, V. Sahgal, G.H. YueAltered central nervous signal during motor performance in chronic fatigue syndrome

Clin Neurophysiol, 115 (2004), pp. 2372-2381

Article

Download PDFView Record in ScopusGoogle Scholar

Peer review under responsibility of Transdisciplinary University, Bangalore.